本试剂盒基于SPRI（Solid Phase Reverse Immobilization）原理，提供一种简单高效的DNA纯化方法。本试剂盒利用优化的缓冲液体系，使磁珠高效结合、释放DNA，并有效去除样本中的蛋白、盐离子、游离核苷酸等杂质，最终获得高质量的DNA，所得DNA可直接用于后续的PCR 、酶切、连接、转化等实验，亦可用于低浓度样品的浓缩。本试剂盒适用于 100bp以上 DNA片段，每个标准反应可以纯化回收25~100µg DNA。
特点1. 操作简捷，耗时短，仅需 30 min 即可获得高纯度 DNA ；
2. 产品可常温保存，稳定性好。 · 储存条件该产品可常温储存。· 其他必要材料无水乙醇、Nuclease-free 离心管、磁力架. ·
使用方法
1. 向待纯化样本中加入等体积 Binding Buffer。样品体积小于 50 μL 时，建议补足至 50 μL ，以保证纯化效率；
2. 将MagBeads涡旋震荡或颠倒数次以充分混匀，参照下表取适量MagBeads加入样品中，用移液枪吹打，充分混匀后于室温孵育 8 min；注意：通常约10μL样品添加1μL磁珠，如有必要可适当增减磁珠用量，延长结合时间以提高得率。
3. 将样品置于磁力架上磁吸 5 min，待磁珠完全聚集后，小心移除上清液（离心管仍置于磁力架上）；
4. 保持样品置于磁力架上，使用 Wash Buffer 漂洗磁珠，室温孵育 30 s ，小心吸去上清；注意：通常Wash Buffer用量为磁珠用量的20倍左右，可参照下表，加入时注意不要扰动磁珠。5. 重复上一步操作，共漂洗两次，尽量吸净残留液体；6. 保持样品置于磁力架上，室温下开盖干燥磁珠3~5 min，使残留的乙醇等液体完全挥发（磁珠表面无明显光泽即可）；7. 将样品从磁力架取出，加入20-100 µL Elution Buffer（亦可用Nuclease-free Water替代），用移液枪轻轻吹打混匀，室温孵育3 min。为提高洗脱效率，可使用 65℃预热 Elution Buffer；注意：Elution Buffer用量一般随磁珠量的增加而相应增加，通常不少于磁珠体积用量的2倍（可参照下表）。8. 将样品置于磁力架上，待磁珠完全聚集后（约2 min左右），小心吸取上清至新的离心管中，该溶液即为纯化的 DNA 样品。纯化的 DNA 可直接进入下一步试验，或者-20℃储存。
特点1. 操作简捷，耗时短，仅需 30 min 即可获得高纯度 DNA ；
2. 产品可常温保存，稳定性好。 · 储存条件该产品可常温储存。· 其他必要材料无水乙醇、Nuclease-free 离心管、磁力架. ·
使用方法
1. 向待纯化样本中加入等体积 Binding Buffer。样品体积小于 50 μL 时，建议补足至 50 μL ，以保证纯化效率；
2. 将MagBeads涡旋震荡或颠倒数次以充分混匀，参照下表取适量MagBeads加入样品中，用移液枪吹打，充分混匀后于室温孵育 8 min；注意：通常约10μL样品添加1μL磁珠，如有必要可适当增减磁珠用量，延长结合时间以提高得率。
3. 将样品置于磁力架上磁吸 5 min，待磁珠完全聚集后，小心移除上清液（离心管仍置于磁力架上）；
4. 保持样品置于磁力架上，使用 Wash Buffer 漂洗磁珠，室温孵育 30 s ，小心吸去上清；注意：通常Wash Buffer用量为磁珠用量的20倍左右，可参照下表，加入时注意不要扰动磁珠。5. 重复上一步操作，共漂洗两次，尽量吸净残留液体；6. 保持样品置于磁力架上，室温下开盖干燥磁珠3~5 min，使残留的乙醇等液体完全挥发（磁珠表面无明显光泽即可）；7. 将样品从磁力架取出，加入20-100 µL Elution Buffer（亦可用Nuclease-free Water替代），用移液枪轻轻吹打混匀，室温孵育3 min。为提高洗脱效率，可使用 65℃预热 Elution Buffer；注意：Elution Buffer用量一般随磁珠量的增加而相应增加，通常不少于磁珠体积用量的2倍（可参照下表）。8. 将样品置于磁力架上，待磁珠完全聚集后（约2 min左右），小心吸取上清至新的离心管中，该溶液即为纯化的 DNA 样品。纯化的 DNA 可直接进入下一步试验，或者-20℃储存。
